有无好用的TUNEL细胞凋亡分析试剂盒推荐？
细胞凋亡中,
染色体DNA双链断裂或单链断裂而产生大量的粘性3'-OH末端，可在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）的作用下，将脱氧核糖核苷酸和荧光素、过氧化物酶、碱性磷酸酶或生物素形成的衍生物标记到DNA的3'-末端，从而可进行凋亡细胞的检测，这类方法称为脱氧核糖核苷酸末端转移酶介导的缺口末端标记法（terminal
-deoxynucleotidyl
transferase
mediated
nick
end
labeling,
TUNEL）。
由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。由此，TUNEL成为了检测DNA片段化（细胞凋亡）的最常用方法。
A***kine
TUNEL法细胞凋亡检测试剂盒
(橙红荧光)
利用脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）将脱氧核糖核苷酸-荧光素偶联物标记到DNA缺口的3'-末端。试剂盒提供实验所需的全套试剂组分以及优化的实验方案，检测方便，且适用于荧光酶标仪、荧光显微镜、流式细胞仪。荧光信号易于被检测（Ex/Em
=
555nm/565
nm）。
细胞凋亡分析试剂盒特点：
1.独家优化的实验方案，分别适用于荧光酶标仪、荧光显微镜、流式细胞仪。
2.通用的荧光检测参数(Ex/Em
=
555nm/565
nm)，检测方便。
tunel染色红色和绿色的区别
TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）细胞凋亡检测试剂盒是用来检测组织细胞在凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是荧光素（fluorescein）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端，并与连接辣根过氧化酶（HRP，horse-radish peroxidase）的荧光素抗体特异性结合，后者又与HRP底物二氨基联苯胺（DAB）反应产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在光学显微镜下即可观察凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA断裂，因而没有3‘-OH形成，很少能够被染色。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）在单细胞水平上的凋亡原位检测。还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段
tunel 试剂盒细胞与组织切片的有区别吗
TUNEL法可以通过原位标记DNA断裂端从而标记凋亡细胞，因此特别适用于组织凋亡研究，是目前研究组织体内细胞凋亡最广泛采 用的手段。同时由于其原理是基于检测早期基因组的断裂，因此可以检测到很早期的细胞凋亡，且能通过标记的多少，进行半定量研究。
TUNEL的缺点是：
1），操作要求高，组织样本需要固定（即使是培养细胞，也需要固定），不恰当的固定方法对实验结果影响很大，导致背景过高或者信号过弱，因此实验结果重复性不好; 有的人花上半年做一个体内的TUNEL是一点都不奇怪的。
2），大部分诱导凋亡的药物也引起DNA损伤，从而产生DNA断裂，易引入假阳性;
3）凋亡晚期细胞基因组大量降解，导致TUNEL标记反而减少，因此此法反应的是早期凋亡比例，不能严格反应凋亡比例，属于半定量研究。
尽管有如此多缺点，但由于其是目前为数不多的能原位标记凋亡细胞的方法，因此用于组织体内凋亡研究仍然是首选。但体外细胞实验研究，很少用此法。
凋亡检测中，TUNEL并不是过时的方法，现在研究凋亡的文献仍然常见。而且相反，还比以前多一点，因为现在体内实验越来越多了，甚至线虫的凋亡研究，都用TUNEL。
凋亡研究中，的确有几种方法过时了，当然是因为有替代方案了，比如DNA ladder，电镜。
至于Annexin V是不能用来和TUNEL一起评论的，前者用于细胞，而且主要是悬浮细胞，后者主要用于组织。虽然有人也做镜下的Annexin V观察，TUNEL的细胞staining，但这都不是主流。
回到lz的原帖，的确如大家所言，做贴壁细胞，不推荐用TUNEL。如果是经典凋亡途径，只是确定比例，用最经典，最常用的subG1法即可，如果是不确定是否是凋亡，用Annexin V，不过贴壁细胞用此法，要注意消化时间。
TUNEL法检测细胞凋亡实验原理和方法谁能提供一下！
原理 在细胞凋亡的过程中，基因组DNA会断裂产生双链、低分子量的DNA片段和高分子量的DNA片段，这些DNA链的缺口可以利用没标记法来识别。试剂盒就是通过催化DNA断端，来标记缺口。酶底物显色后，可以光镜检查被染色的细胞。
方法 TUNEL 试剂盒
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